引言：X连锁视网膜色素变性（X-linked Retinitis Pigmentosa，XLRP）的临床背景与未满足需求
X连锁视网膜色素变性（X-linked retinitis pigmentosa，XLRP）是一种严重的遗传性视网膜营养不良，其特征为进行性光感受器退变，最终导致夜盲、周边视野缺损并可进展至失明。RPGR基因，尤其是ORF15异构体的突变，约占XLRP病例的大多数。然而，RPGR ORF15区域由于其重复、易不稳定的序列，且易形成二级结构并发生隐匿性剪接，历来极难克隆和表达，这也给基因替代治疗的开发带来了重大挑战。现有治疗策略仍以支持治疗为主，凸显出亟需能够阻止或逆转XLRP患者光感受器退变的有效分子治疗。
研究设计与方法
本研究采用前瞻性实验性研究设计，使用经优化的RPGR ORF15转基因，并通过重组腺相关病毒5型（recombinant adeno-associated virus serotype 5，rAAV5）递送，以克服固有的克隆不稳定性并提高治疗效果。研究者构建了密码子优化的RPGR序列，旨在消除不利的二级结构和隐匿性剪接位点，并在体外于HEK 293T细胞和光感受器样661W细胞中验证其表达；同时建立了表型严重的Rpgr敲除（Rpgr-KO）小鼠模型，该模型表现出明显的光感受器丢失和功能缺陷。
通过视网膜下注射将携带优化后RPGR构建体的rAAV5分别以3个递增剂量给药（每眼1×10^9、3×10^9和1×10^10个病毒基因组，vg/eye）。研究在注射后12个月和14个月等较长时间点，对视网膜结构和功能进行评估，包括外核层厚度和视网膜电图（electroretinography，ERG）参数，以评价长期治疗效应。安全性评价则在兔模型中进行，视网膜下注射载体后随访1个月。
主要发现：疗效与安全性结果
优化后的rAAV5-RPGR载体在体外使RPGR蛋白表达较野生型序列提高3.3倍，并消除了可能产生不良影响的截短异构体。剂量依赖性的视网膜转基因表达适当定位于光感受器内段，这对于RPGR的生理功能至关重要。
在严重的Rpgr-KO小鼠模型中，高剂量基因治疗（1×10^10 vg/eye）显著保留了光感受器结构：在注射部位，与对照组相比，14个月时外核层厚度增加42%（P<0.01），且在视网膜中央区域亦见显著保留（P<0.05）。此外，治疗减轻了视紫红质错误定位这一RPGR缺乏所致视网膜退变的标志性改变，提示光感受器蛋白转运功能得到恢复（P<0.01）。功能性ERG分析与结构性结果一致，接受治疗的动物在标准化刺激强度下，暗适应a波振幅显著改善，可达≥100 μV，而未治疗对照组<90 μV；明适应b波振幅亦由31–46 μV提高至49–66 μV。
重要的是，在兔安全性模型中未观察到与载体相关的毒性或不良反应，提示该基因治疗方案具有良好的安全性特征。
专家点评与机制学启示
这些结果为采用经理性优化的RPGR ORF15转基因、并通过rAAV5递送作为XLRP基因替代治疗提供了有力的临床前概念验证。该策略巧妙地解决了ORF15不稳定性这一此前阻碍临床开发的技术瓶颈。转基因在光感受器内段的靶向定位与RPGR在纤毛运输和蛋白转运中的生理作用相一致，而这对于光感受器的维持和功能至关重要。
尽管这些发现令人鼓舞，但向人体临床试验转化仍需考虑物种间差异、剂量设定以及长期安全性。此外，在老龄个体和晚期疾病状态下，基因表达的持续性及功能恢复的持久性仍有待进一步证实。尽管如此，鉴于目前RPGR相关XLRP的治疗选择十分有限，这些临床前进展标志着视网膜基因治疗开发中的一个重要里程碑。
结论与未来方向
本研究成功表明，经密码子工程优化并由rAAV5载体递送的RPGR ORF15，可在严重XLRP小鼠模型中恢复光感受器结构并部分恢复功能，且未检测到明显毒性。该优化载体克服了与不稳定野生型ORF15序列相关的关键分子难题，为后续转化研究和临床评价奠定了基础。未来研究应重点扩大安全性评估范围、在更多模型中验证疗效，并启动临床试验，以确定其在XLRP患者中的治疗潜力。
资助与临床试验注册
原始文献未报告资助来源及临床试验注册号。
参考文献
Chen X, Xu X, Cao S, Pan C, Wei S, Hou B, Zhou H. Optimized AAV5-RPGR ORF15 Gene Therapy Rescues Photoreceptor Structure and Function in XLRP Mouse Model. American Journal of Ophthalmology. 2026 Jun 9. PMID: 42263801.
